蛋白质含量测定的标准方法

如题所述

应该是问蛋白质含量测定的方法吧。方法有以下几种:
1、直接测定UV法。
2、凯氏定氮法。
3、双缩脲法。
4、酚试剂法。
5、紫外吸收法。
6、BCA法。
7、Lowry法。
8、考马斯亮蓝法。
9、Bradford法测定试剂盒。
蛋白质含量增高,常见于多发性骨髓瘤患者,主要是异常球蛋白增加;血浆浓缩也可使蛋白质含量增加,如急性脱水、外伤性休克、肾病等。
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第1个回答  2023-10-18
蛋白质含量的测定有多种方法,但以下几种是较为常用的标准方法:
一、Bradford 方法:
1.原理: 该方法基于染料Coomassie Brilliant Blue G-250与蛋白质结合后吸收光的变化。
2.优势: 反应特异性好,不容易受其他杂质的干扰,操作简单。
3.局限性: 某些蛋白质可能对染料的结合反应性较低,导致准确性下降。
二、Lowry 方法:
1.原理: 此法基于铜离子与蛋白质结合在碱性环境下形成的络合物,与Folin-Ciocalteu试剂反应产生的颜色变化。
2.优势: 对蛋白质的检测灵敏度高。
3.局限性: 可能受到某些化学试剂的干扰。
三、BCA 方法 (Bicinchoninic Acid):
1.原理: 该方法基于铜离子与蛋白质在碱性环境中形成的络合物与BCA试剂反应产生的紫色络合物的吸光度变化。
2.优势: 稳定性好,对许多化合物的容忍性较高。
3.局限性: 反应时间较长。
四、紫外吸收法 (UV Absorption):
1.原理: 蛋白质中的芳香族氨基酸(如酪氨酸和苯丙氨酸)在280nm处有吸收峰。
2.优势: 快速,简单。
3.局限性: 需要蛋白质纯度高,不受其他杂质的干扰。
第2个回答  2020-11-24
测定蛋白质的方法可分为两大类:一类是利用蛋白质的共性,即含氮量、肽键和折射率测定蛋白质含量;另一类是利用蛋白质中特定氨基酸残基、酸性和碱性基团以及芳香基团等测定蛋白质含量。常见的方法有:凯氏定氮法、双缩脲法、酚试剂法及紫外吸收法。
1.凯氏定氮法
准备4个50mL凯氏烧瓶并标号,想1、2号烧瓶中加入定量的蛋白质样品,另外两个烧瓶作为对照,在每个烧瓶中加入硫酸钾-硫酸铜混合物,再加入浓硫酸,将4个烧瓶放到消化架上进行消化,之后进行蒸馏,全部蒸馏完毕后用标准盐酸滴定各烧瓶中收集的氨量,直至指示剂混合液由绿色变回淡紫红色,即为滴定终点,结算出蛋白质含量。
2.双缩脲法
双缩脲法是第一个用比色法测定蛋白质浓度的方法,硫铵不干扰显色, Cu2+与蛋白质的肽键,以及酪氨酸残基络合,形成紫蓝色络合物,此物在540nm波长处有最大吸收。首先利用标准蛋白溶液和双缩脲试剂绘制标准曲线,将待测血清与硫酸钠在待测试管中混合,并用只加入硫酸钠不含血清的试管作为对照,将两支试管加入等量的双缩脲试剂,充分混合后于37℃环境中放置10分钟,在540nm波长进行比色,以对照管调零,读取吸光度值,由标准曲线上直接查出蛋白质含量。双缩脲法常用于0.5g/L~10g/L含量的蛋白质溶液测定。
3.酚试剂法
取6支试管分别标号,前5支试管分别加入不同浓度的标准蛋白溶液,最后一支试管加待测蛋白质溶液,不加标准蛋白溶液,每支试管液体总量通过加入蒸馏水补足而保持一致,将液体混合均匀,在室温下放置30分钟,以未加蛋白质溶液的第一支试管作为空白对照,于650nm波长处测定各管中溶液的吸光度值
4.紫外吸收法
大多数蛋白质在280nm波长处有特征的最大吸收,这是由于蛋白质中有酪氨酸,色氨酸和苯丙氨酸存在,可用于测定0.1~0.5mg/mL含量的蛋白质溶液。取9支试管分别标号,前8支试管分别加入不同浓度的标准蛋白溶液,1号试管不加标准蛋白溶液,最后一支试管加待测蛋白质溶液,而不加标准蛋白溶液,每支试管液体总量通过加入蒸馏水补足而保持一致,将液体混合均匀,在280nm波长处进行比色,记录吸光度值。本回答被网友采纳
第3个回答  2022-01-09

测定蛋白质的方法可分为两大类:一类是利用蛋白质的共性,即含氮量、肽键和折射率测定蛋白质含量;另一类是利用蛋白质中特定氨基酸残基、酸性和碱性基团以及芳香基团等测定蛋白质含量。常见的方法有:凯氏定氮法、双缩脲法。
1.凯氏定氮法
准备4个50mL凯氏烧瓶并标号,想1、2号烧瓶中加入定量的蛋白质样品,另外两个烧瓶作为对照,在每个烧瓶中加入硫酸钾-硫酸铜混合物,再加入浓硫酸,将4个烧瓶放到消化架上进行消化,之后进行蒸馏,全部蒸馏完毕后用标准盐酸滴定各烧瓶中收集的氨量,直至指示剂混合液由绿色变回淡紫红色,即为滴定终点,结算出蛋白质含量。
2.双缩脲法
双缩脲法是第一个用比色法测定蛋白质浓度的方法,硫铵不干扰显色, Cu2+与蛋白质的肽键,以及酪氨酸残基络合,形成紫蓝色络合物,此物在540nm波长处有最大吸收。首先利用标准蛋白溶液和双缩脲试剂绘制标准曲线,将待测血清与硫酸钠在待测试管中混合,并用只加入硫酸钠不含血清的试管作为对照,将两支试管加入等量的双缩脲试剂,充分混合后于37℃环境中放置10分钟,在540nm波长进行比色,以对照管调零,读取吸光度值,由标准曲线上直接查出蛋白质含量。双缩脲法常用于0.5g/L~10g/L含量的蛋白质溶液测定。

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